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提问人:网友 发布时间:
【简答题】

用 BamHI切割一重组质粒 DNA 分子并从中分离纯化了两个 DNA片段,一段长400bp,另一段长 900bp。现在希望将这两个片段重新连接起来,得到如图 1 所示的结果。 <br /> 于是将这两种片段混合起来,并在连接酶的存在下进行温育,分别在 30 分钟和 8 小时取样进行凝胶电泳分析,令人惊讶的是,连接产物并非是理想中的 1.3kb的重组分子,而是一种复杂的片段模式(图 A)。同时发现随着温育时间的延长,较小片段的浓度逐渐降低,大片段的浓度逐渐增加。如果用 BamHI来切割连接后的混合物,则起始的片段可以重新产生(图 A)。 <br /> 从凝胶中分离纯化出 1.3kb 的片段,并取出一部分用 BamHI进行切割,以检查它的结构。正如预料的一样,出现了两个原始的带(图 B)。但是用 EcoRI切割另一部分样品,希望能够产生两个 300bp 和一个长度为 700bp 的核苷酸片段,然而,凝胶电泳的结果,令人惊奇(图 B)。<br /> <img src="https://nimg.ppkao.com/2018-05/wangjing/2018052916545144081.jpg?sign=5d499c9247404dd70859770f240d2de2&t=62d47d0b" /><br /> <img src="https://nimg.ppkao.com/2018-05/wangjing/2018052916551476046.jpg?sign=4671721af54c23624f3a3c78a16d89d4&t=62d47d0b" /> 在原始连接混合物中为什么有如此多的带?

更多“ 用 BamHI切割一重组质粒 DNA 分子并从中分离纯化了两个 DNA片段,一段长400bp,另一段长 900bp。现在希望将这两个片段重新连接起来,得到如图 1 所示的结果。 <br /> 于是将这两种片段混合起来,并在连接酶的存在下进行温育,分别在 30 分钟和 8 小时取样进行凝胶电泳分析,令人惊讶的是,连接产物并非是理想中的 1.3kb的重组分子,而是一种复杂的片段模式(图 A)。同时发现随着温育时间的延长,较小片段的浓度逐渐降低,大片段的浓度逐渐增加。如果用 BamHI来切割连接后的混合物,则起始的片段可以重新产生(图 A)。 <br /> 从凝胶中分离纯化出 1.3kb 的片段,并取出一部分用 BamHI进行切割,以检查它的结构。正如预料的一样,出现了两个原始的带(图 B)。但是用 EcoRI切割另一部分样品,希望能够产生两个 300bp 和一个长度为 700bp 的核苷酸片段,然而,凝胶电泳的结果,令人惊奇(图 B)。<br /> <img src="https://nimg.ppkao.com/2018-05/wangjing/2018052916545144081.jpg?sign=5d499c9247404dd70859770f240d2de2&t=62d47d0b" /><br /> <img src="https://nimg.ppkao.com/2018-05/wangjing/2018052916551476046.jpg?sign=4671721af54c23624f3a3c78a16d89d4&t=62d47d0b" /> 在原始连接混合物中为什么有如此多的带?”相关的问题
第1题

A、BamHI切割重组质粒DNA分子并从中分离纯化了两个DNA片段,段长400bp,另段长900bp。现在希望将这两个片段重新连接起来,得到如图1所示的结果。
于是将这两种片段混合起来,并在连接酶的存在下进行温育,分别在30分钟和8小时取样进行凝胶电泳分析,令人惊讶的是,连接产物并非是理想中的1.3kb的重组分子,而是种复杂的片段模式(图A)。同时发现随着温育时间的延长,较小片段的浓度逐渐降低,大片段的浓度逐渐增加。如果BamHI切割连接后的混合物,则起始的片段可以重新产生(图A)。
从凝胶中分离纯化出1.3kb的片段,并取出部分BamHI进行切割,以检查它的结构。正如预料的样,出现了两个原始的带(图B)。但是EcoRI切割部分样品,希望能够产生两个300bp和个长度为700bp的核苷酸片段,然而,凝胶电泳的结果,令人惊奇(图B)。

  

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第2题

A、它的分子量较小,易于进入细胞  B、含有抗四环素(TetR)和抗氨苄青霉素(AmpR)的基因  C、若EcoRI切割质粒,不破坏它的两个抗生素抗性基因  D、BamHI限制酶切割pBR322质粒,将破坏它的抗氨苄青霉素基因  

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第7题
[简答题] 打算将个 cDNA 克隆到个表达载体,以便在 E.coli 中大量制备相应的蛋白质。这个cDNA 的两侧具有 BamHI的位点,因此计划将它从 BamHI的位点插入载体中。实验严格地按照克隆手册中的方法进行:载体 BamHI切割以后,立即碱性磷酸酶处理除去 5’磷酸;接着将处理过的载体同 BamHI切割的 cDNA 片段混合,加入 DNA连接酶后进行温育,连接之后,将 DNA 同已处理过的可以接受 DNA的细菌感受态细胞混合。最后,将混合物涂布在加有抗生素固体培养基的平板上。由于载体上带有抗生素的抗性基因,所以,转化的细菌能够存活。实验中同时设置了 4 个对照: 对照1: 将未同任何载体接触过的细菌细胞涂布在培养平板上; 对照2: 将未切割载体转化过的细菌细胞涂布在培养平板上; 对照3: 将经切割(但未碱性磷酸酶处理)并连接酶连接(但没有cDNA片段)的载体转化过的细菌细胞涂布在培养平板上; 对照4: 将经切割(并碱性磷酸酶处理过)并 DNA连接酶连接(但没有cDNA片段)的载体转化过的细 菌细胞涂布在培养平板上。 在进行第次实验时,感受态细胞不是自己制备的,结果,在所有的平板上都长出了多到无法计数的菌落(表 2)。在第二次实验中,自己制备感受态细胞,但这次,所有的平板上都没有菌落生长(表 2)。接着又进行了第三次实验,这次得到了转化子(表 2)。从实验平板上挑出 12 个菌落,分离了质粒 DNA,并 BamHI进行切割,其中 9个克隆产生大小同载体样的单条带,另三个克隆中切出个cDNA 片段,实验终于获得成功。 你如何看待第次的实验结果?对照 1 的目的是什么?

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第8题
[简答题] 我们实验室研究生做了个如下的实验:将pdc基因(丙酮酸脱羧酶)克隆到pUC18载体中,以便在E.coli TOP10中表达,这个pdc基因两侧具有BamHI的位点,因此计划将它从BamHI的位点插入载体中。实验严格按分子克隆实验手册中进行:载体BamHI切割后,立即碱性磷酸酶处理,接着将处理过的载体同BamHI切割的pdc基因混合,加入T4连接酶进行温育,连接后,将DNA同处理过的可以接受外源DNA的E.coli TOP10感受态细胞混合。最后将混合物涂布在加有氨苄青霉素、IPTG和x-gal固体培养基的平板上。  实验中同时设置了4个对照:  对照1:将未同任何载体接触过的细菌细胞涂布在培养平板上。 对照2:将未切割载体转化过的细菌细胞涂布在培养平板上。  对照3:将经切割(但未碱性磷酸酶处理)并T4连接酶连接(但没有pdc基因)的载体转化过的细菌细胞涂布在培养平板上。  对照4:将经切割(并碱性磷酸酶处理过)并T4连接酶连接(但没有pdc基因)的载体转化过的细菌细胞涂布在培养平板上。  在进行第次实验时,感受态细胞不是自己制备的,结果,在所有的平板上都长出了多到无法计数的菌落(见下表1)。在第二次实验中,自己制备感受态细胞,但这次,所有的平板上都没菌落生长(见下表1)。接着又进行了第三次实验,这次得到了转化子(见下表1)。从实验平板上挑出12个菌落,分离质粒DNA,并BamHI进行切割,其中9个克隆产生大小同载体pUC18样的单条带,另3个克隆中切出个pdc基因,实验终于获得成功。 为什么要碱性磷酸酶处理载体?

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第9题
[简答题] 我们实验室研究生做了个如下的实验:将pdc基因(丙酮酸脱羧酶)克隆到pUC18载体中,以便在E.coli TOP10中表达,这个pdc基因两侧具有BamHI的位点,因此计划将它从BamHI的位点插入载体中。实验严格按分子克隆实验手册中进行:载体BamHI切割后,立即碱性磷酸酶处理,接着将处理过的载体同BamHI切割的pdc基因混合,加入T4连接酶进行温育,连接后,将DNA同处理过的可以接受外源DNA的E.coli TOP10感受态细胞混合。最后将混合物涂布在加有氨苄青霉素、IPTG和x-gal固体培养基的平板上。 实验中同时设置了4个对照: 对照1:将未同任何载体接触过的细菌细胞涂布在培养平板上。 对照2:将未切割载体转化过的细菌细胞涂布在培养平板上。 对照3:将经切割(但未碱性磷酸酶处理)并T4连接酶连接(但没有pdc基因)的载体转化过的细菌细胞涂布在培养平板上。 对照4:将经切割(并碱性磷酸酶处理过)并T4连接酶连接(但没有pdc基因)的载体转化过的细菌细胞涂布在培养平板上。 在进行第次实验时,感受态细胞不是自己制备的,结果,在所有的平板上都长出了多到无法计数的菌落(见下表1)。在第二次实验中,自己制备感受态细胞,但这次,所有的平板上都没菌落生长(见下表1)。接着又进行了第三次实验,这次得到了转化子(见下表1)。从实验平板上挑出12个菌落,分离质粒DNA,并BamHI进行切割,其中9个克隆产生大小同载体pUC18样的单条带,另3个克隆中切出个pdc基因,实验终于获得成功。 你如何看待第次的实验结果?对照1的目的是什么?

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